乳腺癌(BrCa)是世界范围内最常见的癌症,诊断为IV期患者的5年相对生存率有所下降。晚期BrCa被认为是不可治愈的,目前仍缺乏有效的治疗策略。识别和表征新的肿瘤抑制基因对于建立有效的晚期BrCa预后生物标志物或治疗靶点非常重要。2021年3月发表于Theranostics(IF=11.556)的文献“Tumor suppressor DRD2 facilitates M1 macrophages and restricts NF-κB signaling to trigger pyroptosis in breast cancer”对此展开了研究。在本文中,在BrCa中,DRD2被发现由于启动子甲基化而下调。DRD2的高表达与更长的生存时间正相关,尤其是在HER2阳性患者中。DRD2还能促进BrCa细胞对紫杉醇的敏感性。DRD2异位表达显著抑制BrCa肿瘤发生。在体内和体外,DRD2也能诱导细胞凋亡和坏死。DRD2通过与β-arrestin2、DDX5和eEF1A2相互作用抑制NF-κB信号通路的激活。有趣的是,DRD2还调节微环境,促进巨噬细胞M1极化,并触发GSDME执行的焦亡。
技术路线
结果
1)DRD2通过启动子甲基化在转录上下调
为了研究新的潜在TSGs,采用BrCa组织和正常组织进行RNA-seq筛选。与正常乳腺组织相比,BrCa组织中DRD2 mRNA表达明显下调(图1A)。免疫组化染色发现,与BrCa组织相比,正常乳腺组织中DRD2蛋白水平也较高(图1B)。同样,基于TCGA,在BrCa中也观察到DRD2 mRNA的下调,并且在BrCa中DRD2启动子甲基化也更频繁(图1C)。根据Kmplot,DRD2的高表达促进了BrCa患者的更长的生存期,这也在HER2阳性基因型患者中可见。但这一优势在Luminal A患者中未见(图1D)。根据RT-PCR和MSP结果,几乎所有的BrCa细胞系与永冻的正常乳腺细胞系相比,都可以看到DRD2 mRNA表达下调或缺失以及启动子甲基化(图1E)。因此,DRD2的高甲基化频率可能有助于其下调BrCa。Aza药物去甲基化恢复了两种沉默的BrCa细胞系MDA-MB231和BT549中DRD2的表达(图1F)。
2)在体内和体外,DRD2的表达抑制BrCa细胞的肿瘤发生
构建过表达DRD2的MDA-MB231和BT549细胞,通过RT-PCR (Figure 2A)和WB (Figure 2B)验证。CCK8实验证明,DRD2异位表达抑制肿瘤细胞生长(图2C)。在单层集落形成实验(图2D)和软琼脂形成实验(图2E)中,DRD2也损害了存活能力。并进行细胞凋亡和细胞周期分布分析。DRD2的表达显著促进了BrCa细胞凋亡(图2F),并阻断了MDA-MB231和BT549在G2/M期的凋亡(图2G)。此外,过表达DRD2促进了BrCa细胞对PTX的敏感性(图2H)。在伤口愈合实验中,异位表达的DRD2比对照组表现出更少的闭合人工伤口的能力(图2I)。与此相一致的是,DRD2的过表达显著降低了BrCa的迁移和侵袭(图2J)。在体内进一步测定了DRD2的抑瘤作用。皮下肿瘤模型显示过表达DRD2模型的肿瘤体积和重量均减小(图2K)。
3)DRD2重新编码Mφ M1表型,下调IL-6和IL-10
据报道,DRD2可调节M1的极化。结果显示,在DRD2表达水平较高的BrCa组织中,M1 Mφ的浸润增加,M2 Mφ的浸润减少(图3A)。为进一步研究DRD2对TAMs的调控作用,构建了BrCa与Mφ共培养体系。当Mφ与表达DRD2的BrCa细胞共培养时,qRT-PCR显示M1表型标记增加,M2 Mφ标记下调(图3B-C)。qRT-PCR也证实了载体转染的BrCa细胞将Mφ调节为M2型(图3C)[12]。WB结果显示,表达DRD2的BrCa细胞上调M1标记iNOS,下调M2标记CD206(图3D)。IF染色显示,与表达DRD2的肿瘤细胞共培养后,Mφ表现为M1表型(图3E)。上述结果表明,BrCa中的DRD2具有将Mφ重新编码为M1表型的能力。
为了探索使Mφ向M1表型分化的关键调控因子,我们进行了细胞因子阵列分析。结果表明,TNF-α和两种诱导M1极化的经典细胞因子IFN γ均未增加。而与Mφ共培养后,DRD2显著下调IL-6和IL-10(图3F)。分析荧光值,进一步证实IL-6和IL-10下调(图3F)。因此,DRD2可以将Mφ重新编码为M1表型,并在crosstalk过程中显著下调IL-6和IL-10。
4)DRD2重编程的Mφ诱导肿瘤细胞的焦亡
如HE所示,来自小鼠模型的肿瘤承载DRD2显示肿瘤细胞死亡增加(图4A)。在免疫组化染色中,表达DRD2的4T1肿瘤样本中pMLKL表达较高(图4A)。根据TUNEL实验,DRD2也促进了体内细胞凋亡(图4B)。DRD2上调GSDME而不是GSDMD(图4C)。在crosstalk过程中,Mφ进一步促进了DRD2转染的BrCa细胞中GSDME的表达(图4C)。在表达DRD2的BrCa细胞中,Mφ也能上调IL-1β(图4C)。WB结果表明,DRD2诱导了MLKL的磷酸化,而在共培养过程中,MLKL被Mφ抑制(图4D)。此外,DRD2表达激活了caspase-8,而激活被Mφ抑制(图4D)。假设,DRD2可能在与Mφ crosstalk时诱发焦亡。BrCa细胞中与Mφ共培养时,NLRP3在表达DRD2的BrCa细胞中被触发。激活的caspase-1蛋白水解也能诱导IL-1β和IL-18的成熟(图4D)。在共培养过程中,Cleaved caspase-3表达上调(图4D)。此外,在共培养过程中发现表达DRD2的BrCa细胞中,GSDME的N端发生了剪切(图4D)。为了确定是否由M1 Mφ引起焦亡,我们使用了LPS诱导的M1 Mφ培养基,结果表明,在表达DRD2的BrCa细胞中,M1 Mφ仅触发NLRP3组装并剪切GSDME(图4E)。以上结果提示, M1 Mφ以DRD2依赖的方式触发BrCa细胞的焦亡。
5)DRD2通过阻断TAK1的磷酸化来限制NF-κB信号的激活
NF-κB信号的激活对于触发炎症小体组装和随后的焦亡是必不可少的。IF染色显示DRD2几乎阻断了p-p65的核易位(图5A),但这种抑制被Mφ所抵消(图5B)。核和细胞质提取物也显示DRD2抑制了p-p65的核易位(图5C)。如WB结果所示,在LPS刺激下,DRD2抑制IKKα/β、IκBα和p65的磷酸化(图5D)。异位DRD2表达也显著抑制了Mφ诱导的p65磷酸化和IKKα/β的上游激活(图5E)。WB结果显示DRD2下调NF-κB的下游靶点ICAM-1。然而,这种下调被Mφ所抵消(图5E)。抑制IKKα/β磷酸化提示DRD2负向介导IKK复合物上游。TAK1在催化IKKα和IKKβ中起关键作用。TAK1的磷酸化被异位DRD2表达显著抑制(图5D-E)。因此,DRD2通过阻断上游激酶TAK1来抑制NF-κB信号通路的激活。
作为一种典型的G蛋白偶联受体, DRD2的内化诱导其受体β-arrestin2在质膜上的募集,并增加其与β-arrestin2的亲和力。LPS和CM刺激了DRD2和β-arrestin2的蛋白-蛋白结合(图5F-G)。同时,通过IF染色观察到,经过LPS处理后,DRD2似乎在细胞质中与p-p65结合(图5A), Co-IP和IB进一步证实了这种结合(图5F)。据报道,β-arrestin2信号的激活会破坏星形胶质细胞中TAK1-Tab1的结合,而这种结合对于TAK1的激活至关重要。本研究还证实,内化的DRD2可以促进TAB1与β-arrestin2的结合,削弱TAB1与TAK1的结合(图5H)。综上所述,DRD2激活的β-arrestin2通过竞争性地结合TAB1来拮抗TAK1的磷酸化。
6)DRD2通过下调DDX5和eEF1A2来抑制NF-κB通路的激活和肿瘤的发生
DRD2异位表达显著抑制了p65和NF-κB靶基因IL-10的mRNA表达(图6A),表明在没有配体激活的情况下,DRD2是NF-κB通路的负调控因子。除了结合激活β-arrestin2外,DRD2还可能通过其他方式抑制NF-κB信号通路。采用Co-IP法分离可能的结合蛋白,并采用质谱法进行蛋白鉴定。MDA-MB231和BT549细胞的所有结合蛋白中,DDX5、eEF1A2和ICAM-1均被异位表达的DRD2下调(图6B-C)。根据以往的研究,DDX5和eEF1A2是几种癌症中的两种致癌基因。WB也证实了DDX5和eEF1A2蛋白水平下调(图6D)。在293T和MDA-MB231中,通过Co-IP和IB实验证实了DRD2、DDX5和eEF1A2的结合(图6E),表明这三种蛋白形成了一个复合物。根据以往的研究,DDX5可以结合p50,并协助IκB释放p50。本研究还揭示了293T和MDA-MB231中DDX5与p50的结合(图6E)。此外,有报道称DRD2可在神经系统中与EGFR结合。在BrCa细胞中,293T和MDA-MB231中也证实了DRD2和EGFR的结合(图6E)。DRD2的表达下调ERBB1 (EGFR)和ERBB2 (HER2)的表达(图6F)。在异位表达DRD2的BrCa细胞中,DDX5可以促进p-IκBα的磷酸化,增加磷酸化p65的蛋白水平(图6G)。eEF1A2可直接显著上调p-p65的表达,而不影响IKKα/β或IκBα,甚至在没有LPS的情况下,eEF1A2可上调表达DRD2的MDA-MB231的p-p65蛋白水平(图6G)。以上结果表明,DDX5和eEF1A2对NF-κB信号通路的促进作用受DRD2异位表达的抑制。
结论:这项研究新发现了一种肿瘤抑制基因-DRD2,可以提高BrCa患者的生存率和PTX治疗反应。DRD2诱导细胞凋亡和坏死,并在Mφ向M1重编程过程中进一步触发焦亡。DRD2通过与β-arrestin2结合,下调DDX5和eEF1A2,从而限制NF-κB信号通路的激活。DRD2是一种潜在的预测预后的生物标志物,并且DRD2是BrCa中一个很有前途的治疗靶点。